Cтраница 2
Материалы, применяемые в машиностроении, делятся на конструкционные и инструментальные. [16]
Материалы, способные осуществлять резание, называются инструментальными материалами; они подразделяются на следующие группы: инструментальные стали, твердые спеченные сплавы ( металлокерамика), минералокерамика, синтетические композиции из нитрида бора и синтетические алмазы. [17]
Материал, загрязненный сопутствующей микрофлорой, засевают на кровяной агар, содержащий 6 - 7 % хлорида натрия. На такой среде подавляется рост энтеробакте-рий и бацилл, а стафилококки растут хорошо и проявляют гемолитическую активность. Посевы инкубируют при 37 С. На следующий день изучают колонии, выделяют и, далее, идентифицируют чистые культуры. Стафилококки, вызывающие пищевые отравления, образуют золотистый, реже белый пигмент, вызывают гемолиз и коагулируют плазму. [18]
Материал для исследования - гной, отделяемое ран, моча, спинномозговая жидкость, кровь, кал и др. Его берут по возможности до начала антибиотикотерапии или во время паузы между антимикробными воздействиями в соответствии с правилами асептики, не допуская контаминации. [19]
Материал собирают в стерильные банки, пробирки в следующем количестве: кал и рвотные массы - 50 - 100 мл; промывные воды - 100 - 200 мл; мясо и мясные продукты - несколько кусков весом 500 г; полужидкие и жидкие продукты ( сметана, молоко и др.) - 100 - 200 мл. Яйца отбирают по пять штук из шести разных мест исследуемой партии, причем в первую очередь те, которые хранились более 7 дней. [20]
Материал для выделения возбудителя - фекалии, кишечные биоптаты, лимфоузлы или ткань удаленного аппендикса, кровь, слизь из ротоглотки - отбирают в соответствии с клинической формой и фазой патогенеза заболевания. Для первичного посева материал, контаминиро-ванный сопутствующей микрофлорой, подвергают щелочной обработке. С этой целью используют 0 5 % - й раствор гидроксида калия в 0 5 % - м хлориде натрия, куда помещают бактериологическую петлю с материалом на 1 мин и затем этой же петлей делают посев на плотную среду. В качестве селективных используют агары CIN, Серова или среду Эндо, которые после посева инкубируют при 32 С в течение 24 - 48 ч или 24 ч при 37 С и столько же при комнатной температуре. Одновременно материал помещают в среду накопления для холодового обогащения. Высевы со среды накопления ( из верхней части пробирки) делают на 3, 5, 10, 15 - е сут на те же плотные среды. [21]
Материал для исследования собирают, упаковывают и доставляют в лабораторию с соблюдением особых предосторожностей. Посуда не должна содержать следов дезинфицирующих растворов, особенно кислот; ее стерилизуют или кипятят в течение 15 мин. [22]
Материал из верхней части 1 - й среды накопления засевают штрихами на плотные элективные среды. [23]
Материал из верхней части 2 - й среды накопления засевают штрихами на плотные элективные среды. [24]
Материал от больного стараются взять до начала антибиотико-терапии. [25]
Материал помещают в банки, которые герметично укупоривают, обрабатывают снаружи 5 % - м раствором лизола, этикетируют с указанием характера материала, даты и места взятия материала, фамилии и инициалов больного и диагноза. Банки плотно укладывают в герметичную тару, на крышке которой указывают Верх, и составляют опись направляемых на исследование материалов. Материалы на специальном транспорте с сопровождающим немедленно доставляют в лабораторию. Лица, контактировавшие с материалом, подозрительным на содержание возбудителя чумы, проходят полную санитарную обработку. Перед началом исследования доставленная тара с материалом и другие потенциально зараженные предметы подлежат обработке дезинфицирующим раствором. [26]
Материал засевают на специальные плотные среды непосредственно или из транспортной, накопительной среды. [27]
Материал от больного или от трупа микроско-пируют. Наличие в мазках крупных грамположительных бацилл, образующих цепочки, окруженные капсулой, дает возможность поставить предварительный диагноз сибирской язвы. Кап-сульная форма возбудителя обнаруживается, как правило, в крови при септической форме заболевания. [28]
Материал для исследования доставляют как можно быстрее, при отсутствии возможности - сохраняют в холодильнике ( до 24 ч) или замораживают. После анестезии глаза ватным тампоном удаляют с конъюнктивы гной, слизь и тупым скальпелем соскабливают эпителий конъюнктивы. [29]
Материал из уретры и цервикального канала забирают специальными щетками или ложками Фолькмана и доставляют в лабораторию в специальной транспортной среде. [30]