Cтраница 1
Изучение обратимой ассоциации белков ( количественное) осуществляют по характерным искажениям седи-ментограмм и концентрационных эффектов С. При наличии быстро протекающих реакций мономер муль-тимер константа равновесия зависит от концентрации. При га4, как правило, разделения компонентов не происходит, но на кривой зависимости dcldx от х возникает характерный шлейф, обусловленный мономером. При га 5 и достаточно высоких to происходит разделение пиков седимен-тограммы, но х1 и х2 ( и соответственно Si и 52) не соответствуют седиментационным коэффициентам мономера и мультимера. [1]
Изучение обратимой ассоциации белков ( количественное) осуществляют по характерным искажениям седи-ментограмм и концентрационных эффектов С. При наличии быстро протекающих реакций мономер муль-тимер константа равновесия зависит от концентрации. При и: 4 как правило, разделения компонентов не происходит, но на кривой зависимости dcldx от х возникает характерный шлейф, обусловленный мономером. [2]
Фриден [11] предположил, что обратимая ассоциация фермента глутаматцегидрогеназы ( ГДГ-аза) из печени быка может использоваться для контроля определенных путей обмена веществ in vivo. Ранние наблюдения, состоящие в том, что молекулы эффекторов, о которых известно, что они модифицируют ГДГ-азную активность, также сильно изменяют свое состояние в зависимости от степени агрегации. [3]
В растворах комплексы возникают в результате обратимой ассоциации одного или нескольких ионов металла М и лигандов L. Здесь и в дальнейшем мы не указываем зарядов. [4]
Бирадикалы XLV и XLV1 в растворе претерпевают обратимую ассоциацию. [5]
Имеется, однако, одно свойство EF-2 ( не имеющее прямого отношения к промотированию транслокации), которое полностью утрачивается после АДФ-рибозилирования. Это - неспецифическая РНК-связывающая способность, которая свойственна эукариотическим факторам элонгации ( так же как и аминоацил-т РНК - синтетезам - см. A. Благодаря этой способности значительная часть EF-2 ( так же как и EF-1) эукариотической клетки оказывается компартментализованной вокруг полирибосом за счет лабильной и обратимой ассоциации с их. АДФ-рибозилирование EF-2 приводит к исчезновению неспецифической РНК-связывающей способности фактора и к его полной декомпартментализации из полири-босомных структур. Может быть, что этот эффект, приводящий к резкому уменьшению локальной концентрации фактора вблизи полирибосом, ответствен, по крайней мере частично, за ингибирование белкового синтеза под действием А-фрагмента дифтерийного токсина. [6]
Исследование этих растворов иод микроскопом указывает на наличие фрагментов волокон различных размеров, набухших в различной степени. Манлей считает, что такие частицы образуются вследствие неравномерного распределения заместителей по цепи. Данные об обратимой ассоциации цепей этого полимера в воде при обычных температурах отсутствуют. Установлено [50], что значения молекулярного веса этого полимера, полученные для растворов в диметилсульфоксиде, выше, чем для водных растворов, что дает возможность сделать вывод об ассоциации этого полимера в растворе диметилсульфоксида. Однако эти данные следует проверить. [7]
С образовывать моно - и би - радикалы. Как видно из рис. 5.15, первые, небольшие порции добавки не оказывают заметного влияния на групповой состав продуктов термолиза. Вещество добавки в этом случае, видимо, концентрируется на поверхности асфальтеновых агрегатов, предотвращая их флокуляцию в системе и переход в карбеновые структуры. Одновременно в системе возможна обратимая ассоциация растущих олигомерных цепей в возрастающей степени по мере роста их молекулярной массы и концентрации. Дальнейшее увеличение концентрации добавки после насыщения сорбционно-сольватных слоев асфальтеновых агрегатов и достижения собственных ассоциатов добавки некоторых критических размеров приводит к образованию в системе поверхностно-активных зародышей нового сорта, вокруг которых начинают формироваться асфальтеновые фрагменты. Размеры таких формирований растут достаточно быстро, что благоприятствует превращению их в карбеновые структуры. [8]
Интерпретация получаемых данных также сталкивается с рядом трудностей. Как уже говорилось, истинная величина молекулярного веса может быть определена различными приемами, если материал монодисперсен. Однако в природных белковых системах обычно содержатся молекулы, различающиеся по форме и величине. Эти различия обусловлены процессами обратимой ассоциации белковых частиц в растворе. Благодаря этому молекулярный вес, определяемый физико-химическими методами, представляет собой средний вес различных частиц, причем тип усреднения зависит от природы применяемого метода. Так, методом осмотического давления может быть определен так называемый среднечисленный молекулярный вес, являющийся средним арифметическим весом всех белковых частиц. [9]
Оказалось, что в эукариотических клетках рибосома с экспонированной сигнальной последовательностью растущего пептида действительно сначала взаимодействует со специальной малой частицей, получившей название сигналузнающей частицы или SRP. Частица представляет собой 11S рибонуклеопротеид, содержащий 7S РНК длиной около 300 нуклеотидов и шесть белков ( полипептидов) с молекулярными массами 72000, 68000, 54000, 19000, 14000 и 9000 дальтон; все эти компоненты находятся в частице в эквимолярных количествах, по одному на частицу. Частицы, по-видимому, универсальны, во всяком случае среди эукариот. Они имеют определенное сродство к мембране эндоплазматиче-ского ретикулума, так что могут находиться с ней в лабильной и обратимой ассоциации, хотя значительная их часть представляет собой растворимый цитоплазматический компонент. Кроме того, они имеют некоторое, относительно небольшое, сродство и к рибосомам. Присутствие на рибосоме сигнального пептида повышает сродство рассматриваемых частиц к рибосоме на несколько порядков. [10]
Но особенно важное применение находит седиментационный анализ при изучении полидисперсности полимеров. Седиментационно-диффузионный анализ представляет собой абсолютный метод изучения полидисперсности и не требует, как большинство других методов, предварительной калибровки; поэтому он незаменим в органическом синтезе полимеров при исследовании процессов полимеризации путем изучения полидисперсности продуктов синтеза и их ММР. Седиментацию используют также для исследования неоднородности состава полимеров, избирательной сольватации, для разделения микроколичеств биологически-активных веществ, а также для анализа концентрационнозависимой обратимой ассоциации биополимеров. [11]