Cтраница 2
Изучение действия ТТХ на испытываемые бактерии при росте их в бульоне в течение 6 ч дало приблизительно те же результаты, что при 18-часовой инкубации посевов. Угнетающее действие испытанных концентраций ТТХ на размножение бактерий отражается уже в первые часы на логарифмической кривой роста культуры и результаты почти не изменяются в последующем. [16]
Инкубацию посевов производят в термостате при температуре 20 - 22 С. [17]
Метод рекомендует использование мембранных фильтров с параллельным выращиванием колоний на теллурит-желточном агаре Инесса и на кровяном агаре для увеличения выделения стафилококков. После инкубации посевов 24 ч при 37 С подозрительные колонии пересевают на кровяной агар для установления гемолиза и на среду Эсбер - Фаулконнера для установления сбраживания маннита и коагуляции плазмы. Учитывают окрашенные в желтый цвет мутные колонии. Метод двухэтапный, требует сложных сред. [18]
При испытании лекарственных средств посевы в тиогликоле-вой среде инкубируют при температуре от 30 до 35 С, а в среде Сабуро - от 20 до 25 С. Продолжительность инкубации посевов в обеих питательных средах составляет 14 сут. [19]
Посев соответствующих объемов производят с соблюдением условий, описанных выше. Через 24 ч инкубации посевов при 37 С учитывают результат. В качестве энтерококков подсчитывают белые, кремовые, розовые колонии, плоские, в основном крупные. Если есть колонии другого вида - выпуклые, ярко окрашенные, то их принадлежность к энтерококкам можно подтвердить по отсутствию каталазной активности и микроскопии. [20]
В качестве сред накопления в этих методах использованы среда Хайна и Перри ( Hajna, Perry, 1943) с содержанием 0 02 % азида натрия, среда Хеннея и Нортона ( Наппеу, Norton, 1947), которая отличается несколько большим содержанием азида натрия ( 0 025 %), добавлением дрожжевого препарата и индикатора бромкрезолового пурпурного. Через 24 ч инкубации посевов отмечают признаки роста, образования кислоты. [21]
Посев соответствующих объемов производят с соблюдением условий, описанных выше. Через 24 ч инкубации посевов при 37 С учитывают результат. В качестве энтерококков подсчитывают белые, кремовые, розовые колонии, плоские, в основном крупные. Если есть колонии другого вида - выпуклые, ярко окрашенные, то их принадлежность к энтерококкам можно подтвердить по отсутствию каталазной активности и микроскопии. [22]
В 14 - м издании Стандартных методов США ( 1975) в качестве среды накопления на первом этапе анализа рекомендуется азид-декстрознын бульон. При наличии мути через 24 ч инкубации посева при 35 С делают пересев не менее 3 больших петель в этилфиолетовый азид-ный бульон. Пробирки с подтверждающим бульоном инкубируют 24 ч при 35 С. Если изменения с подтверждающей среды не произошло, тс делают повторный высев из среды накопления, где отмечены признаки роста. [23]
В 14 - м издании Стандартных методов США ( 1975) в качестве среды накопления на первом этапе анализа рекомендуется азид-декстрозный бульон. При наличии мути через 24 ч инкубации посева при 35 С делают пересев не менее 3 больших петель в этилфиолетовый азид-ный бульон. Пробирки с подтверждающим бульоном инкубируют 24 ч при 35 С. Если изменения с подтверждающей среды не произошло, то делают повторный высев из среды накопления, где отмечены признаки роста. [24]
Эти исследования позволяют нам рекомендовать для быстрого и точного определения тестов Шермена плотные среды с добавлением глюкозы на основе стандартного сухого питательного агара из гидролизата рыбы, который содержит необходимые для размножения энтерококков питательные вещества. Целесообразно добавлять также дрожжевые препараты. Предложенные модификации просты в выполнении, результаты четко определяются после 24 ч инкубации посевов при 37 С. Метод существенно экономит среды, на одной чашке можно испытывать до 8 штаммов одновременно. [25]
Испытуемый препарат считают удовлетворяющим требованиям испытания на стерильность при отсутствии роста микроорганизмов. При обнаружении роста хотя бы в одной пробирке ( колбе, флаконе) его подтверждают микроскопированием и повторяют испытание на таком же количестве образцов, как и в первый раз. При отсутствии роста микроорганизмов при повторном посеве испытуемый препарат считают удовлетворяющим требованию испытания на стерильность. В случае роста микроорганизмов при повторяем посеве, морфологически сходных с микроорганизмами, выявленными в первичном посеве, испытуемый препарат считают нестерильным. Если при повторном посеве наблюдается рост микроорганизмов, отличающихся по морфологии от первоначально выделенных, испытание повторяют в третий раз на удвоенном количестве образцов. При отсутствии роста микроорганизмов после инкубации посевов в третьем испытании испытуемый препарат считают удовлетворяющим требованиям на стерильность. При наличии роста хотя бы в одной пробирке испытуемый препарат считают нестерильным. [26]
Испытуемый препарат считают удовлетворяющим требованиям испытания на стерильность при отсутствии роста микроорганизмов. При обнаружении роста хотя бы в одной пробирке ( колбе, флаконе) его подтверждают микроскопированием и повторяют испытание на таком же количестве образцов, как и в первый раз. При отсутствии роста микроорганизмов при повторном посеве испытуемый препарат считают удовлетворяющим требованию испытания на стерильность. В случае роста микроорганизмов при повторном посеве, морфологически сходных с микроорганизмами, выявленными в первичном посеве, испытуемый препарат считают нестерильным. Если при повторном посеве наблюдается рост микроорганизмов, отличающихся по морфологии от первоначально выделенных, испытание повторяют в третий раз на удвоенном количестве образцов. При отсутствии роста микроорганизмов после инкубации посевов в третьем испытании испытуемый препарат считают удовлетворяющим требованиям на стерильность. [27]